如何從植物中提取基因組DNA

發布 科學 2024-02-04
10個回答
  1. 匿名使用者2024-01-25

    植物基因組DNA提取試劑盒。

    引言]植物DNA提取試劑盒採用獨特的磁珠分離和緩衝系統,從植物中分離純化出高質量的植物DNA,特殊包被的磁珠在一定條件下對植物DNA具有很強的親和力,當條件發生變化時,磁珠釋放出吸附的DNA,可以達到植物DNA快速分離純化的目的。整個過程不涉及有毒試劑,提取的核酸安全、方便、純度高、質量可靠。 使用HuitongTM植物DNA提取試劑盒純化的植物DNA可用於各種正常規模的操作,包括酶消化、PCR文庫建立、分子標記和Southern雜交測定。

    特點] 1耗時更少:植物DNA提取週期約為40分鐘。

    2.易於採購:無需刻意選擇新鮮的植物材料。

    3.易於操作:提取過程只需一次離心。

    4.無毒無害:試劑不含氯仿、苯酚等有毒物質,無需液氮研磨。

    5.效果穩定:OD260 和 OD280 介於兩者之間。

    6.自動化:可與國內外各種磁棒核酸提取儀或核酸提取工作站配合使用。

    如何使用] 1裂化。

    取植物組織,將研缽輕輕研磨,加入緩衝液,研磨均勻,轉移到試管中,加入緩衝液和緩衝液混合均勻,將EP管放入恆溫水箱中保溫。

    2.合。 從孵育裝置中取出EP管,離心後取上清液,加入振盪混合的磁珠偶聯物,將混合物顛倒過來。 將EP管放在磁力架上進行磁分離,丟棄廢液(吸出管蓋和管底部的殘液)。

    3.洗。 加入洗滌液,點振動數次(如有團塊或細絲,可增加點振動次數和強度),然後磁選,吸出管蓋和管底的殘液;

    加入洗滌液,點振動數次(如有團塊或細絲,可增加點振動次數和強度),然後磁選,吸出管蓋和管底的殘液;

    重複步驟一次;

    在室溫下開啟蓋子晾乾。

    4.洗脫。 加入洗脫液,置於水浴中孵育,然後磁分離,小心地將上清液移入新的EP管中進行下游實驗。

    河南惠爾奈米技術****獨家。

  2. 匿名使用者2024-01-24

    第一種方法是測量 260 到 280 的比例,以確定是否存在蛋白質汙染。 確定 DNA 溶液在 260 nm 和 280 nm 處的光吸收,介於兩者之間 A260 和 A280 的比例。 低於該值的值表示製備物中殘留的蛋白質成分或苯酚含量較高,高於該值的值表示存在 RNA 殘留。

    第二種方法是凝膠電泳分析,以檢視是否存在碎裂和降解。

    影響DNA提取質量的因素:

    如果在實驗開始時未用液氮處理植物樣品,則提取物中CTAB的濃度需要增加到4%。

    在大多數情況下,使用巰基乙醇並不能完全抑制葉子的氧化。 但這種氧化不會影響限制性內切酶的活性。 如果使用的巰基乙醇濃度較高,DNA提取的得率將大大降低。

  3. 匿名使用者2024-01-23

    首先是測量260 280的比例,以確定是否存在蛋白質汙染。

    二是跑膠,看有無斷裂、退化。

    如果不用液氮處理植物樣品,則需要將提取物中的CTAB濃度提高到4%(W v)。 在許多情況下,使用巰基乙醇並不能完全抑制葉片中的氧化,但是,這種氧化不影響限制性內切酶的活性。 如果使用的巰基乙醇濃度較高,DNA的產量將大大降低。

  4. 匿名使用者2024-01-22

    可以通過測量其濃度和OD值來確定,並且還有一種方法可以將亮度與標記進行比較。 因為標記物知道濃度。

  5. 匿名使用者2024-01-21

    正確答案:通常採用機械研磨來破碎植物組織和細胞,因為植物絲的勻漿中含有多種對DNA提取產生不利影響的酶(尤其是氧化酶),需要在提取緩衝液中加入抗氧化劑或強還原劑(如巰基乙醇)以降低這些酶的活性。 在液氮中研磨使材料容易破碎,並減少了研磨過程中各種酶的作用。

  6. 匿名使用者2024-01-20

    DNA的溶解度 NaCl的溶解度很小,可以將其分離出來;

    有些雜質易溶於95%的酒精,不溶於DNA,可進一步分離。

  7. 匿名使用者2024-01-19

    從細胞中分離出來的DNA是與蛋白質結合的DNA,其中還含有大量的RNA,即核醣核蛋白。 如何有效地分離這兩種核蛋白是該技術的關鍵,而鹽洛喬法是DNA提取的常規技術之一。 在核酸的製備中,通常通過研磨破壞細胞壁和細胞膜,從而釋放核蛋白。

    通過利用 DNA 不溶於 NACI 溶液而 RNA 可溶於 NACI 溶液這一事實,可以從樣品破碎的細胞液中去除 DNA 核蛋白和 RNA 核蛋白。

    分離和分離核蛋白後,需要進一步除去蛋白質和其他雜質。 除去蛋白質的方法有3種,用含有辛醇或異戊基的氧仿振盪核蛋白溶液進行乳化,然後離心除去變性蛋白,用這種方法處理時,蛋白質停留在水相和氯仿相之間,DNA溶解在上層水相中,DNA的鈉鹽可用兩倍體積的95%乙醇溶液沉澱。 十二烷基硫酸鈉(SDS)等洗滌劑用於使蛋白質變性,以將其與核酸分離,也可以直接從材料中提取DNA。

    將DNA溶解在上層水相中,蛋白質變性後停留在酚層中,吸出上層水相,加入兩倍體積的95%乙醇,得到白色纖維狀DNA沉澱。 反覆。

    用上述方法多次處理DNA核蛋白溶液可完全除去DNA核蛋白溶液,採用CTAB方法可得到更純淨的DNA產物為了從DNA產物中完全去除受汙染的RNA雜質,可以使用RNA酶,生物材料中含有大量的脂質控制物質和多醣,當核蛋白在鹽溶液中分離並用乙醇或異丙醇分餾時,可以去除這些物質和多醣。

    核酸純化目標:純化的核酸樣品中不應有抑制醇類的有機溶劑和超標的重金屬離子:應儘量減少對蛋白質、多醣和脂質分子等其他生物大分子物質的汙染:應排除RNA分子汙染。

    希望它有幫助,二苯胺在沸水浴中染成藍色。

  8. 匿名使用者2024-01-18

    破壁-溶解-分離-淨化。

  9. 匿名使用者2024-01-17

    我知道方法,但我真的忘記了具體原理是什麼。

  10. 匿名使用者2024-01-16

    由於以下幾個原因,退化也就不足為奇了:

    1.加入提取物後,如果以65度提取,時間過長可能會造成部分降解。

    2.滴加氯仿異戊醇後,劇烈混合時間過長,導致部分DNA片段化 3、破碎組織時最好採用液氮處理和研磨,在後期混合過程中,破碎組織時容易造成DNA片段化。

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